БАКТЕРИАЛЬНАЯ МИКРОФЛОРА И СВОЙСТВА МИКРОФЛОРЫ ПРИ АБСЦЕССАХ И ФЛЕГМОНАХ ЧЕЛЮСТНО-ЛИЦЕВОЙ ОБЛАСТИ

25 Sep 2013

УДК 616.31:006-07:614.4-07

 

К.Б. Дюсупов, В. О. Кенбаев

Городская больница скорой медицинской помощи №2 г.Шымкент

Актуальность проблемы гнойной инфекции в стоматологии характеризуется неуклонным ростом одонтогенных и других гнойно-воспалительных заболеваний челюстно-лицевой области, учащением тяжелых форм этих заболеваний с частыми осложнениями, вплоть до летального исхода, требующих больших по объему хирургических вмешательств и проведения интенсивной терапии (1,2).

Состав и свойства микрофлоры при гнойно-септической инфекции челюстно-лицевой области довольно хорошо известны (3).

В литературе име­ются сообщения о постоянном изменении характеристик воз­будителей этих заболеваний в течение последних десятилетий.

До применения антибиотиков основным возбудителем гнойно-воспалительных заболеваний и послеоперационных осложне­ний был α-гемолитический Streptococcus.

Применение анти­биотиков, к которым Streptococcus весьма чувствителен и прак­тически не приобретает резистентности, обусловило снижение его этиологической роли как возбудителя хирургической ин­фекции. Сравнительно большую приспособляемость к дейст­вию антибиотиков проявил Staphylococcus, биологическая пе­рестройка которого определила формирование антибиотикорезистентных штаммов.

К концу 80-х годов Staphylococcus занял доминирующее положение в структуре возбудителей гнойной хирургической инфекции. В монокультуре и ассоциациях он выделялся в 60-70 % случаев.

В настоящее время все больший удельный вес в этиологии гнойной инфекции приобретает условно-патогенная микро­флора. Эта группа возбудителей стала высокопатогенной в условиях применения антибиотиков, к которым она проявляет выраженную природную и приобретенную устойчивость.

Целью работы явилось изучение состава микрофлоры гнойных ран челюстно-лицевой области в зависимости от типа воспаления с 2000 по 2010 годы.

Материал и методы.

Материалом для иссле­дования служило содержимое гнойных ран. Пробы для анализа брали в 03 % сахарный бульон. Посевы инкуби­ровали в аэробных условиях при температуре 37 °С в те­чение 24 ч с последующей идентификацией с помощью дифференциально-диагностических сред.

Чувствительность к антибиотикам определяли стандартным методом бумажных дисков.

Для выделения строго анаэробных микроорганизмов от больных с гнойно-воспалительными заболеваниями мате­риал брали на тампон со специальной транспортно-консервирующей смесью (10 % лизированной крови человека, 10 % глицерина и 8 % физиологического раствора).

До­ставленный материал засевали методом истощения (с  целью получения изолированных колоний) на поверх­ность свежеприготовленного кровяного агара для бактеро­идов, а также в специальную жидкую среду. Чашки и пробирки с посевами немедленно помешали в микроанаэростаты, которые заполняли природным газом. Посевы инкубировали при 37 °С не менее 48 ч, после чего просмат­ривали с помощью стереоскопического микроскопа и подсчитывали количество колоний каждого вида. Затем от­дельные колонии отсевали в жидкую среду для получения чистых культур.

Выделенные анаэробные микроорганизмы испытывали на чувствительность к антибиотикам модифицированным методом бумажных дисков.

Результаты исследования.

При нормергическом типе воспалительной реакции облигатно-анаэробные бактерии составили 57,5 % участников ассоциа­ций, факультативно-анаэробные и аэробные — 29,7 %, на долю микроаэрофильных видов пришлось 12,8 %.

Преимуществен­ное большинство составили анаэробные кокки рода Peptostreptococcus (22 %).

 

Таблица 1 — Качественный состав микрофлоры гнойных ран у больных с нормергическим типом воспаления

Вид микроорганизмов	Число штаммов
	абс.	%
Облигатно-анаэробные	55,7	57,6
В том числе: Bacteroides Fusobacterium Peptostreptococcus Peptococcus Прочие	18,0 7,0 22,7 2,0 6,0	18,6 7,8 22,0 4,2 5,0
Факультативно-анаэробные и аэробные	28	29,7
В том числе: Staphylococcus Streptococcus Прочие	18,0 4,0 6,0	20,8 3,2 5,7
Микроаэрофильные виды	12,4	12,7
ВСЕГО	96,1	100

Из факультативно-анаэробных бактерий доминировали кокки Staphylococcus (20,8%).

 

Таблица 2 — Качественный состав микрофлоры гнойных ран у больных с гипергическим типом воспаления

Вид микроорганизмов	Число штаммов
	абс.	%
Облигатно-анаэробные	104	66,0
В том числе: В. Melaninogenicus В. Fragilis Bacteroides Fusobacterium Streptococcus Peptococcus Прочие	18,0 8,0 22,0 38,0 14,0 5,0 4,0	8,2 3,4 10,4 30,6 9,2 2,5 1,7
Факультативно-анаэробные и аэробные	41	23,0
В том числе: Staphylococcus Streptococcus Bacillus Neisseria Acinetobacter Enterobacteriaceae P. aeruginosa	18,0 6,0 2,0 3,0 6,0 6,0 1,0	11,9 3,0 0,2 1,7 3,0 3,0 0,2
Микроаэрофильные виды В том числе: S. milled S. sanguis S. salivarius S. mitis	16,0 4,0 6,0 4,0 2,0	11,0 2,8 3,9 2,5 1,8
ВСЕГО	161,0	100

При гипергическом типе воспалительной реакции происхо­дила активация различных видов резидентной микрофлоры.

Из раневого экссудата выделено значительно большее количество и число видов бактерий, чем при других типах воспаления. Преобладала анаэробная микрофлора (66 %), в которой доми­нировали бактерии рода Fusobacterium (30,6 %), Bacteroides (10,4 %).

Только при данном типе высевали В. melaninogenicus (8,2 %) и В. fragilis (3,4%). Факультативно-анаэробные и аэроб­ные виды составили 23 % участников ассоциаций, на долю микроаэрофильных видов пришлось 11 %.

Таблица 3 — Качественный состав микрофлоры гнойных ран у больных с гиперергическим типом воспаления

Вид микроорганизмов	Число штаммов
	абс.	%
Облигатно-анаэробные	45,0	71,5
В том числе: Bacteroides Fusobacterium Peptostreptococcus Прочие	20,0 7,5 15,5 2,5	32,5 14,4 24,4 1,2
Факультативно-анаэробные и аэробные	17,6	20,5
В том числе: Staphylococcus Streptococcus Прочие	6,0 4,0 7,6	8,0 2,5 10,5
Микроаэрофильные виды	8,4	8,0
ВСЕГО	71,0	100

 

При гиперергическом типе воспалительной реакции облигатно-анаэробные бактерии составили 71,5 % участников ассоциаций, факультативно-анаэробные и аэробные  20,5%, микроаэрофильные виды — 8,4 %.

Были различными и показатели суммарной бактериальной обсемененности раневого экссудата при различных типах воспаления.

При нормергическом типе этот показатель составил 5,1х10⁵ КОЕ/мл, при гипергическом  7,5х10⁶ и при гиперергическом  5,6х10⁶ КОЕ/мл.

Самое высокое обсеменение раны микроорганизмами было при гипергическом типе воспаления.

 

 

Список литературы

1       Губин М.А., Харитонов Ю.М., Гирко Е.И. и др. Диагностика и лечение осложнений острой одонтогенной инфекции // Стоматология. — 1996, спец. выпуск. — С. 39-40.

2       Дмитриева Н.А. Гнойно-воспалительные осложнения челюстно-лице­вой области, структура возбудителей и возможные пути профи­лактики. Дис. … канд. мед. наук. — М., 1993. — 111 с.

3       Дробышев А. Ю. Комплексное лечение больных с флегмонами челюст­но-лицевой области с применением тактивина: Автореф. дис. … канд. мед. наук. — М., 1996. — 25 с.

 

 

 

Резюме: Анализ данных микробиологических исследо­ваний за 10 лет позволяет сделать следующие выводы. Наблюдается тенденция к росту гнойно-воспалительных заболеваний челюстно-лицевой области.

Меняется этиологическая структура гнойно-воспалительных процессов челюстно-лицевой области.

Основными возбудителями указан­ных процессов становятся представители рези­дентной флоры макроорганизма.

 

 

Resume: Data analysis microbiology for 10 years led to the following conclusions. Rising trend of inflammatory diseases of maxillofacial area сhanging etiological structure inflammatory processes maxillofacial region. The main agents of these processes are representatives of the resident flora mаcroorganism.

 

 

БАКТЕРИАЛЬНАЯ МИКРОФЛОРА И СВОЙСТВА МИКРОФЛОРЫ ПРИ АБСЦЕССАХ И ФЛЕГМОНАХ ЧЕЛЮСТНО-ЛИЦЕВОЙ ОБЛАСТИ